ارزیابی حضور مایکوباکتریوم پاراتوبرکولوزیس در بزاق گاوهای مبتلا به فرم تحت بالینی بیماری یون

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
افشین جعفری دهکردی 1
کیوان غنی زاده 1
مسعود قربانپور 2
1 گروه علوم درمانگاهی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهرکرد
2 گروه پاتوبیولوژی دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهرکرد
10.22034/ijvcs.2025.116353
چکیده
بیماری یون که توسط مایکوباکتریوم تحت گونه ایویوم پاراتوبرکلوزیس (MAP) ایجاد می شود، یک بیماری مزمن التهابی روده است که نشخوارکنندگان در سراسر جهان را تحت تأثیر قرار می دهد. تشخیص زود هنگام دامهای آلوده به MAP برای کنترل بیماری بسیار مهم است. هدف از این مطالعه بررسی حضور MAP در نمونه بزاق گاوهای مبتلا به فرم تحت بالینی بیماری یون است.
نمونه بزاق از 40 رأس گاو سرم مثبت مبتلا به بیماری فرم تحت بالینی یون که از طریق PCR مدفوع تایید شدند، جمع آوری گرید. همچنین از 40 رأس گاو سرم منفی نیز به عنوان شاهد نمونه بزاق اخذ گردید. سپس آزمایش PCR بر روی نمونه های جمع آوری شده برای بررسی آلودگی به MAP صورت گرفت.
نتایج به این صورت بود که بزاق 30 رأس از 40 رأس گاو سرم مثبت مبتلا به فرم تحت بالینی یون (٪ 75) از نظر MAP مثبت بودند. در گروه شاهد، تنها بزاق 4 رأس گاو از 40 رأس گاو سرم منفی (10%) از نظر MAP بزاق مثبت بودند. این تفاوت بین دو گروه از نظر آماری معنی دار بود.
تاکنون در بین محققان این باور وجود داشته است که MAP عمدتاً از طریق مدفوع- دهانی منتقل می شود. با این حال، یافته های مطالعه حاضر نشان دهنده پتانسیل آلودگی از طریق بزاق وجود دارد و باید به عنوان عامل مهمی در نظر گرفته شود. گزارش تعداد بالای موارد مثبت MAP در نمونه های بزاق نشان می‌دهد که این روش می‌تواند جایگزین‌ ارزشمندی برای نمونه‌های مدفوع برای تشخیص زودهنگام بیماری باشند.
کلیدواژه‌ها
پاراتوبرکولوزیس
تحت بالینی
بزاق
گاو
موضوعات

عنوان مقاله English

Evaluation of the presence of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in the saliva of cows with subclinical form of john’s disease

نویسندگان English

Afshin Jafari Dehkordi 1
Keyvan Ghanizadeh 1
Masoud Ghorbanpoor 2
1 Department of clinical science veterinary faculty of Shahrekord university
2 Department of pathobiology veterinary faculty of Shahrekord university
چکیده English

Johne's disease, caused by Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis (MAP), is a chronic inflammatory bowel disease affecting ruminants worldwide. Early detection of MAP-infected animals is crucial for disease control. This study aimed to investigate the presence of MAP in saliva and urine samples of cows with subclinical Johne's disease, as a non-invasive and easily accessible diagnostic approach.
Saliva samples were collected from 40 seropositive cows with subclinical Johne's disease, confirmed through fecal PCR. An additional 40 seronegative cows were included as controls. PCR testing was conducted on the selected samples to check for MAP contamination.
Out of the 40 seropositive cows with subclinical Johne's disease, 30 (75%) tested positive for MAP in saliva samples. In the control group, only four cows (10%) tested positive for MAP in saliva. The difference in MAP detection between the diseased and control groups was statistically significant.
Until now, it has been widely believed among researchers that MAP, primarily transmits through the fecal-oral route. However, the findings of the current study indicate the potential for contamination through saliva, which is an important factor to consider. The high prevalence of MAP in these samples suggests that they may also serve as valuable alternatives to fecal samples for early disease detection.

کلیدواژه‌ها English

Paratuberculosis
subclinical
Saliva
Cows
 
1.  Antognoli  MaC,  Garry  FB,  Hirst  HL Lombard JE, Dennis MM, Gould DH, et al. Characterization of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis disseminated infection in dairy cattle and its association with antemortem test results. Veterinary microbiology. 2008;127(3-4):300-8.
2. Barrington GM, Gay JM, Eriks IS, Davis WC, Evermann JF, Emerson C, et al. Temporal patterns of diagnostic results in   serial   samples   from   cattle   with advanced paratuberculosis infections. Journal     of     veterinary     diagnostic investigation. 2003;15(2):195-200.
3. Bates A, Oac Brien R, Liggett S, Griffin F.  Control of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis infection on a New   Zealand   pastoral   dairy   farm. BMC veterinary research. 2019;15(1):1-13.
4.  Bhide M, Chakurkar E, Tkacikova  L, Barbuddhe S, Novak M, Mikula I. IS900-PCR-based detection and characterization    of    Mycobacterium avium   subsp.   paratuberculosis   from buffy    coat    of    cattle    and    sheep. Veterinary microbiology. 2006;112(1):33-41.
5.  Bower K,  Begg  DJ,  Whittington  RJ. Optimisation of culture of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis from blood samples. Journal of microbiological methods. 2010;80(1):93-9.
6. Buergelt CD, Donovan GA, Williams JE. Identification of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis by polymerase chain reaction in blood and semen    of    a    bull    with    clinical paratuberculosis. Intern J Appl Res Vet Med. 2004;2(2):130-4.
7. Camanes G, Joly A, Fourichon C, Ben Romdhane R, Ezanno P. Control measures to prevent the increase of paratuberculosis prevalence in dairy cattle    herds:    an    individual-based gland transcriptome associated with Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis  experimental challenge.  BMC genomics. 2019;20(1):1-13.
8.   Corti   S,   Stephan   R.   Detection   of ycobacterium avium subspecies paratuberculosis  specific  IS900 insertion sequences in bulk-tank milk samples  obtained  from  different regions throughout Switzerland. BMC Microbiology. 2002;2(15):15-21
9. Edwards JE, Kim EJ, Davies DR, Hanafy R, Kingston-Smith AH. Ruminant Salivary Microbes: Passenger or Player in     the     Rumen? Microorganisms. 2023;11(10):2390.
10. Garcia AB, Shalloo L. Invited review: The economic impact and control of paratuberculosis in cattle. Journal of dairy science. 2015;98(8):5019-39.
11.   Juste   RA,   Garrido   JM,   Geijo   M, Elguezabal N, Aduriz G, Atxaerandio R, et al. Comparison of blood polymerase chain reaction and enzyme- linked immunosorbent assay for detection of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis infection in cattle and sheep. Journal of veterinary diagnostic investigation. 005;17(4):354-9.
12. Keen JE, Elder RO. Isolation of shiga-toxigenic Escherichia coli O157 from hide surfaces and the oral cavity of finished beef feedlot cattle. Journal of the American Veterinary Medical Association. 2002;220(6):756-63.
13.  Koets  AP,  Eda  S,  Sreevatsan  S.  The within  host  dynamics  of Mycobacterium avium ssp. paratuberculosis infection in cattle: where  time  and  place  matter. Veterinary research. 2015;46(1):1-17.
14.    Lombard    JE.    Epidemiology and economics of paratuberculosis. Veterinary Clinics: Food Animal Practice. 2011;27(3):525-35.
15.    Mallikarjunappa S, Adnane M, Cormican P, Karrow NA, Meade KG. Characterization of the bovine salivary modelling approach. Veterinary research. 2018;49(1):60.
16. Marcé C, Ezanno P, Weber MF, Seegers H, Pfeiffer DU, Fourichon C. Invited review: modeling within-herd transmission of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis in dairy cattle:   a   review.   Journal   of   dairy science. 2010;93(10):4455-70.
17.  McKenna SLB,  Keefe GP,  Tiwari  A, VanLeeuwen J, Barkema HW. Johne's disease in Canada part II: disease impacts, risk factors, and control programs for dairy producers. The Canadian          veterinary          journal. 2006;47(11):1089.
18.  Naser  SA,  Ghobrial  G,  Romero  C, Valentine  JF.  Culture  of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis from the blood of patients with Crohn's disease. The Lancet. 2004;364(9439):1039-44.
19.   Nielsen   SS,   Toft   N.   Age-specific characteristics of ELISA and fecal culture for purpose-specific testing for paratuberculosis. Journal of dairy science. 2006;89(2):569-79.
20.  Patterson  S,  Bond  K,  Green  M,  Van Winden S,  Guitian J. Mycobacterium avium paratuberculosis infection of calves, the impact of dam infection status Preventive veterinary medicine. 2020; 181: 104634-50.
21.  Sorge  US,  Kurnick  S,  Sreevatsan  S. Detection of Mycobacterium avium subspecies  paratuberculosis  in  the saliva of dairy cows: a pilot study. Veterinary  microbiology.  2013;164(3-):383-6.
22. Whalin L, Weary DM, von Keyserlingk AG. Understanding behavioural development   of   calves   in   natural settings  to  inform  calf  management. Animals. 2021;11(8):2446.
23. Windsor PA, Whittington RJ. Evidence for   age   susceptibility   of   cattle   to Johne's  disease.  The  Veterinary Journal. 2010;184(1):37-44.
24.  Woodbine  KA,  Schukken  YH,  Green LE, Ramirez-Villaescusa A, Mason S, Moore SJ, et al. Seroprevalence and epidemiological characteristics of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis on 114 cattle farms in south west England. Preventive veterinary medicine. 2009;89(1-2):102-109.
علوم درمانگاهی دامپزشکی ایران
دوره 18، شماره 1 - شماره پیاپی 30
بهار و تابستان 1403
مرداد 1403
صفحه 55-61