مطالعه رادیوآناتومیکی مهره‌های گردنی خوکچه‌هندی بر پایه یافته‌های توموگرافی کامپیوتری

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
زهرا یعقوب‌زاده 1
محمدرضا حسینچی 2
سیامک علیزاده 3
1 دانش‌آموخته دکترای عمومی دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه- ایران
2 گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، واحد ارومیه، دانشگاه آزاد اسلامی، ارومیه- ایران
3 گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، واحد نقده، دانشگاه آزاد اسلامی، نقده- ایران
10.22034/ijvcs.2025.15053.1119
چکیده
هدف از این مطالعه بررسی مورفولوژی و مورفومتری مهره‌های گردنی خوکچه‌هندی (Cavia porcellus) بر اساس تصاویر توموگرافی کامپیوتری (CT) بود. در این مطالعه از 10 سر خوکچه‌هندی سالم (5 نر و 5 ماده) استفاده شد. متعاقب بی‌هوشی هر خوکچه‌هندی، سی‌تی‌اسکن از ابتدای مهره اطلس تا انتهای مهره هفتم گردنی آن در پلن‌های عرضی، ساجیتال و دورسال انجام گرفت. بر اساس یافته‌های این مطالعه، بال‌های مهره اطلس خوکچه‌هندی پهن بوده و هر بال دارای یک سوراخ جانبی است که در پلن دورسال CT بهتر قابل مشاهده است. در قسمت میانی بریدگی آلار این مهره، شیاری دیده می‌شود که به سوراخ جانبی منتهی می‌شود. این یافته برای اولین‌بار گزارش می‌گردد و می‌تواند مبین آناتومی مقایسه‌ای این حیوان با سایر گونه‌های جوندگان مانند موش سوری و موش صحرایی باشد. در تصاویر ساجیتال و دورسال CT، زائدة ادونتوئید مهره آسه به‌صورت یک برجستگی طویل و گرد دیده می‌شود. زائده عرضی مهره C6 دارای یک برآمدگی شکمی وسیع و یک قسمت پشتی کوچک‌تر است که توسط یک بریدگی از هم جدا می‌شوند. این ویژگی خاص مهره C6 در آناتومی مقایسه‌ای این‌گونة جانوری مطرح می‌گردد. مهره C3 کمترین و مهره C7 بیشترین  VH را در بین مهره‌های گردنی دارند (05/0P≤). مقدار پارامترهای TDCrVF و VDCrVF در مهره اطلس بیش از سایر مهره‌ها است (05/0P≤). یافته‌های این تحقیق می‌تواند در آموزش آناتومی توموگرافی کامپیوتری مهره‌های گردنی خوکچه‌هندی، تفسیر تصاویر سی‌تی‌اسکن و نیز در معاینات بالینی و امور درمانی این حیوان خانگی مورد استفاده قرار گیرد.
کلیدواژه‌ها
آناتومی
توموگرافی کامپیوتری
خوکچه‌هندی
مهره‌های گردنی

عنوان مقاله English

Radioanatomical study of guinea pig cervical vertebrae based on CT scan findings

نویسندگان English

Zahra Yaghobzadeh 1
Nohammadreza Hosseinchi 2
Siamak Alizadeh 3
1 D.V.M. Graduate Student, Faculty of Veterinary Medicine, Ur. C., Islamic Azad University, Urmia- Iran.
2 Department of Basic Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Ur. C., Islamic Azad University, Urmia- Iran
3 Department of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, Nag. C., Islamic Azad University, Naghadeh- Iran
چکیده English

This study aimed to investigate the morphology and morphometry of the cervical vertebrae of guinea pigs (Cavia porcellus) based on computed tomography (CT) images. In this descriptive cross-sectional study used 10 healthy guinea pigs (5 males and 5 females). Following anesthesia of each guinea pig, CT scans were performed from the beginning of the atlas vertebra to the extremity of the seventh cervical vertebra in the transverse, sagittal, and dorsal planes. According to the findings of this study, the wings of the atlas vertebra are wide and each process has a lateral foramen that is better visible in the dorsal plane. In the middle of the alar notch of this vertebra, a groove is visible that leads to the lateral foramen of this vertebra. The odontoid process or dens of the C2 vertebra is seen as an elongated, rounded protrusion on sagittal and dorsal CT images. The transverse process of the C6 vertebra has with ventral portion and a dorsal portion separated by a notch. The C3 and C7 vertebrae had the lowest and highest VH respectively (P≤0.05). The values ​​of TDCrVF and VDCrVF parameters in the atlas vertebra were higher than in other vertebrae (P≤0.05). The findings of this study can be utilized to the teaching of computed tomographic anatomy of the cervical vertebrae of the guinea pig, the interpretation of CT scan images, as well as performing clinical and treatment examinations this lovely pet.

کلیدواژه‌ها English

Anatomy
Computed tomography
Guinea pig
Cervical vertebrae
1-    Bartáková A, Nováková M, Stracina T. Anesthetized Guinea Pig as a Model for Drug Testing. Physiological Research. 2022; 71(6 Suppl 2):S211.
2-    Bertolini F, Gandolfi B, Kim ES, Haase B, Lyons LA, Rothschild MF. Evidence of selection signatures that shape the Persian cat breed. Mammalian Genome. 2016; 27:144-55.
3-    Boonsri B, Nganvongpanit K, Buddhachat K, Punyapornwithaya V, Kongtueng P, Kaewmong P, et al. Morphometric analysis of cervical vertebrae in some marine and land mammals. Anatomia, Histologia, Embryologia. 2021; 50(5):812-25.
4-    Bouxsein ML, Boyd SK, Christiansen BA, Guldberg RE, Jepsen KJ, Müller R. Guidelines for assessment of bone microstructure in rodents using micro–computed tomography. Journal of bone and mineral research. 2010; 25(7):1468-86.
5-    Cameron K, Holder H, Connor R. Cross-sectional survey of housing for pet guinea pigs (Cavia porcellus) in New Zealand. New Zealand Veterinary Journal. 2022; 70(4):228-32.
6-    Chawla S, Jena S, Nayak S. The Laboratory Guinea Pig. Essentials of Laboratory Animal Science: Principles and Practices. 2021:239-51.
7-    Cohen S, Ho C. Review of rat (Rattus norvegicus), mouse (Mus musculus), guinea pig (Cavia porcellus), and rabbit (Oryctolagus cuniculus) indicators for welfare assessment. Animals. 2023;13(13):2167
8-    De Silva M. Gross and Microscopic Morphological Anatomical Study of the Guinea Pig (Cavia porcellus) and the Capybara (Hydrochoerus hydrochaeris), Aimed at the Preparation of a Comparative Anatomical Atlas of the Different Systems. 2022.
9-    Del Chicca F, Puccinelli C, Petrini D, Citi S. Incidental Findings in Computed Tomography Examination of the Head in Rabbits and Guinea Pigs. Veterinary Sciences. 2023; 10(8):504.
10- Evans E, Benato L. Pain management in pet guinea pigs (Cavia porcellus): a review of limitations of current knowledge and practice. Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 2024.
11- Flesarova S, Mazensky D, Supuka P. Study of possible anatomical arrangement of the vertebral artery in guinea pig. Biologia. 2015; 70:547-52.
12- Gómez Martin N, Domínguez Miño E, García de Carellán A, Vilalta Solé L. Abdominal ultrasound features and reference values in healthy guinea pigs (Cavia porcellus). Veterinary Record. 2024;194(2):no-no.
13- Harano T, Kutsukake N. Body size evolution in otters distinguished from terrestrial mustelids. Journal of Evolutionary Biology. 2024; 37(2):152-61.
14- Keane M, Paul E, Sturrock CJ, Rauch C, Rutland CS. Computed tomography in veterinary medicine: currently published and tomorrow’s vision. Computed tomography-advanced applications. 2017:271-89.
15- Korim F, Kuricová M. Are the Variations of the Vascular System in Neurology Underestimated? Folia Veterinaria. 2022; 66(3):74-9.
16- Mähler M, Berard M, Feinstein R, Gallagher A. FELASA recommendations for the health monitoring of mouse, rat, hamster, guinea pig and rabbit colonies in breeding and experimental units. Laboratory animals. 2014; 48(3):178-92.
17- Martinez-Pereira MA, Zancan DM. Comparative anatomy of the peripheral nerves.  Nerves and nerve injuries: Elsevier; 2015. p. 55-77.
18- Maženský D, Flešárová S, Prokeš M. ARTERIES OF THE CERVICAL SPINAL CORD IN THE GUINEA PIG. FOLIA. 2014; 58(4):220-3.
19- McCready JE, Barboza T. Rodent Pediatrics. Veterinary Clinics: Exotic Animal Practice. 2024; 27(2):193-219.
20- McDougall JJ, Andruski B, Schuelert N, Hallgrímsson B, Matyas JR. Unravelling the relationship between age, nociception and joint destruction in naturally occurring osteoarthritis of Dunkin Hartley guinea pigs. PAIN®. 2009; 141(3):222-32.
21- Nourinezhad J, Rostamizadeh V, Ranjbar R. Morphotopographic characteristics of the extrinsic innervation of the heart in guinea pigs (Cavia porcellus). Annals of Anatomy-Anatomischer Anzeiger. 2022; 242:151911.
22- Nourinezhad J, Tabrizinejad MN, Janeczek M. Detailed gross anatomy and topography of the sympathetic cardiac nerves and related ganglia in Syrian hamsters (Mesocricetus auratus). Annals of Anatomy-Anatomischer Anzeiger. 2022; 239:151842.
23- Okada M, Kitagawa M, Nagasawa A, Itou T, Kanayama K, Sakai T. Magnetic resonance imaging and computed tomography findings of vertebral osteosarcoma in a cat. Journal of Veterinary Medical Science. 2009; 71(4):513-7.
24- Özkadif S, Eken E, Kalaycı İ. A three-dimensional reconstructive study of pelvic cavity in the New Zealand rabbit (Oryctolagus cuniculus). The Scientific World Journal. 2014; 2014.
25- Pignon C, Mayer J. Guinea pigs. Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery Elsevier. 2020; 270-97.
26- Proks P, Johansen TM, Nývltová I, Komenda D, Černochová H, Vignoli M. Vertebral formulae and congenital vertebral anomalies in guinea pigs: A Retrospective Radiographic Study. Animals. 2021; 11(3):589.
27- Randall EK. PET-computed tomography in veterinary medicine. Veterinary Clinics: Small Animal Practice. 2016; 46(3):515-33.
28- Reinecke T, Angielczyk K. Raccoons Reveal Hidden Diversity in Trabecular Bone Development. Integrative Organismal Biology. 2024; 6(1):obae038.
29- Santos ACd, Miglino MA, Silva FMو Alcantara, D, Carvalho R. CDevelopment of the central nervous system in guinea pig (Cavia porcellus, Rodentia, Caviidae). (2016).
30- Schwarz T, Saunders J. Veterinary computed tomography: John Wiley & Sons; 2011.
31- Silva FM, Alcantara D, Carvalho RC, Favaron PO, Santos ACd, Viana DC, et al. Development of the central nervous system in guinea pig (Cavia porcellus, Rodentia, Caviidae). Pesquisa Veterinária Brasileira. 2016; 36(08):753-60.
32- Spotorno AE, Marín JC, Manríquez G, Valladares J, Rico Ed, Rivas C. Ancient and modern steps during the domestication of guinea pigs (Cavia porcellus L.). Journal of Zoology. 2006; 270(1):57-62.
33- Stan F. Anatomical Particularities of Male Reproductive System of Guinea Pigs (Cavia porcellus). Bulletin of the University of Agricultural Sciences & Veterinary Medicine Cluj-Napoca Veterinary Medicine. 2015;72(2).
34- Stan F. Anatomical differences and similarities of the pancreas in guinea pig (Cavia porcellus) and domestic rabbit (Oryctolagus cuniculus). 2017.
35- Steen M. Experimental infection of moose (Alces alces) with Elaphostrongylus spp.(Nematoda, protostrongylidae) originating from reindeer (Rangifer tarandus) and moose, with special emphasis on clinical signs, gross-and microscopic lesions, and predilection sites. Alces: A Journal Devoted to the Biology and Management of Moose. 2022; 58:113-27.
36- Veterinaria NA. International committee on veterinary gross anatomical nomenclature (ICVGAN). Published by the Editorial Committee, Hannover. 2017.
37- Wilczyńska A, Komsta R, Szadkowski M, Ziętek J, Adaszek Ł. Prevalence of Encephalitozoon cuniculi Infection in Guinea Pigs (Cavia porcellus) in Poland with Different Clinical Disorders—A Pilot Study. Animals. 2023;13(12):1992.
38- Wilhite R, Wölfel I. 3D Printing for veterinary anatomy: An overview. Anatomia, histologia, embryologia. 2019; 48(6):609-20.
39- Witkowska A, Alibhai A, Hughes C, Price J, Klisch K, Sturrock CJ, et al. Computed tomography analysis of guinea pig bone: architecture, bone thickness and dimensions throughout development. PeerJ. 2014; 2:e615.
40- Zipser B, Schleking A, Kaiser S, Sachser N. Effects of domestication on biobehavioural profiles: a comparison of domestic guinea pigs and wild cavies from early to late adolescence. Frontiers in zoology. 2014; 11(1):1-14.
علوم درمانگاهی دامپزشکی ایران
دوره 19، شماره 1 - شماره پیاپی 32
بهار و تابستان 1404
مرداد 1404
صفحه 21-35