بررسی تغییرات هیستوپاتولوژیک و پاسخ ایمنی جوجه‌های عاری از عوامل بیماری‌زای خاص (SPF) پس از واکسیناسیون با واکسن‌های برونشیت عفونی ژنوتیپ‌های GI-1,GI-13و GI-23

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
نجمه معتمد 1
محمد اسلام پناه 2
1 بخش تحقیق و تولید واکسنهای طیور، موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج ، ایران
2 محقق بخش پاتولوژی و اپیدمیولوژی دام، موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
10.22034/ijvcs.2026.15000.1098
چکیده
بیماری برونشیت عفونی با واکسنهای زنده یا غیرفعال کنترل می شود اما آیا این واکسنها با وجود بررسیهای متعدد در خصوص ایمن بودن برای جوجه عوارضی مانند مشکلات تنفسی ممکن است در فیلد ایجاد نمایند. هدف از این مطالعه ارزیابی آسیب شناسی و پاسخ ایمنی ناشی از واکسن با رژیم واکسیناسیون رایج در یک روزگی در جوجه های عاری از عوامل بیماریزای خاص(SPF) بود. 4 گروه 20 تایی جوجه SPF در روز اول پس از تفریخ به روش بینی-چشمی با دو واکسن از دو سروتیپ ماساچوست و 793/B و نیز یک گروه ماساچوست با واریانت2 محصول شرکتهای مختلف واکسن به صورت دی والان واکسینه شدند. گروه کنترل تنها همین مقدار سرم فیزیولوژی دریافت نمود.فعالیت مژکهای تنفسی، پاسخ پادتنی و تغییرات آسیب شناسی بافتهای نای و کلیه و ریه در روزهای 5 و 8 پس از واکسیناسیون مورد ارزیابی قرار گرفت. پاسخ پادتنی در همه گروههای تیمار پس از واکسیناسیون افزایش مشهود داشت اما بیشترین تیتر در گروه واکسن H120 + واریانت2 بود. ضایعات آسیب شناسی از پرخونی، دژنراسیون تا کنده شدن سلولهای اپی تلیال و سپس هایپرپلازی مخاط در همه گروهها در نای، ریه و کلیه مشهود بود. از نتایج این مطالعه می توان نتیجه گرفت واکسن برونشیت علاوه بر تحریک ایمنی ضایعاتی ایجاد می کند که با تمایل سویه ویروس به بافت هدف هماهنگ بوده و این امر باید مورد توجه مرغداران و دامپزشک مزرعه هنگام تزریق واکسن قرار گرفته و با درمانهای حمایتی یا پیشگیرانه از بروز عفونتهای ثانویه باکتریایی یا تلفات جلوگیری به عمل آید.
کلیدواژه‌ها
نای
کلیه
آسیب شناسی
پادتن
حفاظت
سویه
موضوعات

عنوان مقاله English

Investigation of Histopathological Changes and Immune Response of Specific Pathogen-Free (SPF) Chickens after Vaccination with Infectious Bronchitis Vaccines of Genotypes GI-1, GI-13 and GI-23

نویسندگان English

Najmeh Motamed 1
Mohammad Islampanah 2
1 Department of Poultry Vaccine Production, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research Education and Extension Organization, Karaj, Iran
2 1Department of Pathology and Epidemiology, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization, Karaj, Iran
چکیده English

Infectious bronchitis is controlled by widespread vaccination with live or inactivated vaccines, but despite numerous studies on their safety for chicks, these vaccines may cause complications such as respiratory problems in the field. The aim of this study was to evaluate the pathology and immune response induced by the vaccine with the current vaccination regimen at one day of age in specific pathogen-free (SPF) chicks. Four groups of 20 SPF chicks were vaccinated intranasally on the first day after hatching with two vaccines from two serotypes, Massachusetts and 793/B, and one group of Massachusetts with variant 2 from different vaccine companies as a bivalent vaccine. Respiratory ciliary activity, antibody response, and pathological changes in tracheal, kidney, and lung tissues were evaluated on days 5 and 8 after vaccination. Antibody response increased significantly in all treatment groups after vaccination, but the highest titer was in the H120 + variant 2 vaccine group. Pathological lesions ranging from hyperemia, degeneration to detachment of epithelial cells and then mucosal hyperplasia were evident in all groups in the trachea, lungs and kidneys. It can be concluded that the bronchitis vaccine, in addition to stimulating immunity and protection, produces lesions that are consistent with the affinity of the virus strain to the target tissue, and this should be taken into account by poultry farmers and farm veterinarians when injecting the vaccine and the occurrence of secondary bacterial infections or deaths should be prevented with supportive or preventive treatments.

کلیدواژه‌ها English

Trachea
Kidney
Histopathology
Antibody
Protection
Strain
1- Abou El-Fetouh M, Mohamed MH, Refat N, Ahmed M, El-Zanaty AE. Pathological Studies on Infectious Bronchitis Disease in Chickens %J Zagazig Veterinary Journal. 2016;44(3):248–59.
2- Ali A, Kilany W, Zain El Abideen M, Sayed M, El-Kady M. Safety and efficacy of attenuated classic and variant 2 infectious bronchitis virus candidate vaccines. Poultry Science. 2018;97:4238–44.
3- Arshad S, Al Salihi K, Noordin MM. “Ultrastructural pathology of trachea in chicken experimentally infected with infectious bronchitis Virus-MH-5365/95,”. Annals of Microscopy, vol 3, pp 43–47, 2002. 2002;3.
4-   Barari M, Khorrami S, Mortazavi SP, Bahonar A, Charkhkar S. Comparative histopathology of three Serotypes of live infectious bronchitis vaccine (IB88 – 4/91 – H120) in broiler chickens. Journal of Poultry Sciences and Avian Diseases. 2024;2(4):9–18.
5-   Benyeda Z, Szeredi L, Mató T, Süveges T, Balka G, Abonyi-Tóth Z, et al. Comparative histopathology and immunohistochemistry of QX-like, Massachusetts and 793/B serotypes of infectious bronchitis virus infection in chickens. Journal of comparative pathology. 2010;143(4):276–83.
6-   Cook JK, Orbell SJ, Woods MA, Huggins MB. Breadth of protection of the respiratory tract provided by different live-attenuated infectious bronchitis vaccines against challenge with infectious bronchitis viruses of heterologous serotypes. Avian pathology : journal of the WVPA. 1999;28(5):477–85.
7-   De Wit JJ. Detection of infectious bronchitis virus. Avian pathology : journal of the WVPA. 2000;29(2):71–93.
8-   El Nemr AI, Talat Hamad R, Ali El-Shemy A, Abdelkhalek4 A, Abdelgaber Mohamed2 M. Pathological, Immunohistochemical, and Molecular Study of Avian Infectious Bronchitis Virus in Egypt %J Egyptian Journal of Veterinary Sciences. 2025;56(1):79–89.
9- Fallah Mehrabadi MH, Bahonar A, Mirzaei K, Ghalyanchi Langeroudi A, Ghafouri SA, Tehrani F, et al. Serological Survey of Avian Influenza (H9N2) in Commercial Ostrich Farms in Iran, 2015 %J Archives of Razi Institute. 2018;73(4):325–30.
10- FallahMehrababdi MH, Ghafouri S, Ghalyanchilangeroudi A, Hosseini H, Khaltabadi Farahani R, Maghsoudloo H, et al. Evaluation of the Antibody Titration in Vaccinated Chickens Against Infectious Bronchitis Virus Using Three Commercial ELISA Kits %J Iranian Journal of Virology. 2018;12(2):13–8.
11-       Farhadi F, Farshid AA, Alavi MH, Ameghi A, Mahmoudi SS. Histopathological evaluation of trachea, lung, and mesonephros in specific pathogen free-eggs embryos inoculated for titration of avian infectious bronchitis virus M41 strain. Veterinary research forum : an international quarterly journal. 2025;16(3):161–6.
12- Hasan, II, Rasheed ST, Jasim NA, Shakor MK. Pathological effect of infectious bronchitis disease virus on broiler chicken trachea and kidney tissues. Veterinary world. 2020;13(10):2203–8.
13- Huang B, Chen S, Wang Z, Feng K, Teng Y, Li R, et al. Development and immunoprotection assessment of novel vaccines for avian infectious bronchitis virus. Virologica Sinica. 2025;40(3):462–76.
14- Hussein aM, jumma qs. Diagnosis of Infectious Bronchitis Infection in Broiler Chicken Farms in Salah Al-Din Governorate %J Egyptian Journal of Veterinary Sciences. 2024;55(6):1619–26.
15- Ismail MI, Tan SW, Hair-Bejo M, Omar AR. Evaluation of the antigen relatedness and efficacy of a single vaccination with different infectious bronchitis virus strains against a challenge with Malaysian variant and QX-like IBV strains. Journal of veterinary science. 2020;21(6):e76.
16- Jackwood MW, Jordan BJ, Roh HJ, Hilt DA, Williams SM. Evaluating Protection Against Infectious Bronchitis Virus by Clinical Signs, Ciliostasis, Challenge Virus Detection, and Histopathology. Avian diseases. 2015;59(3):368–74.
17- Khataby K, Kichou F, Loutfi C, Ennaji MM. Assessment of pathogenicity and tissue distribution of infectious bronchitis virus strains (Italy 02 genotype) isolated from moroccan broiler chickens. BMC veterinary research. 2016;12:94.
18- Lunge VR, Kipper D, Streck AF, Fonseca ASK, Ikuta N. Emergence and Dissemination of the Avian Infectious Bronchitis Virus Lineages in Poultry Farms in South America. 2025;12(5):435.
19- Najimudeen SM, Hassan MSH, Goldsmith D, Ojkic D, Cork SC, Boulianne M, et al. Molecular Characterization of 4/91 Infectious Bronchitis Virus Leading to Studies of Pathogenesis and Host Responses in Laying Hens. Pathogens (Basel, Switzerland). 2021;10(5).
20- S MN, Barboza-Solis C, Ali A, Buharideen SM, I MI, Hassan MSH, et al. Pathogenesis and host responses in lungs and kidneys following Canadian 4/91 infectious bronchitis virus (IBV) infection in chickens. Virology. 2022;566:75–88.
21- Shoushtari H, Motamed N. False layer syndrome in a commercial layer flock associated with infectious bronchitis virus variant. Exploratory Animal and Medical Research. 2023;13:277–82.
22- Smialek M, Tykalowski B, Dziewulska D, Stenzel T, Koncicki A. Immunological aspects of the efficiency of protectotype vaccination strategy against chicken infectious bronchitis. BMC veterinary research. 2017;13(1):44.
23- Sultan HA, Ali A, El Feil WK, Bazid AHI, Zain El-Abideen MA, Kilany WH. Protective Efficacy of Different Live Attenuated Infectious Bronchitis Virus Vaccination Regimes Against Challenge With IBV Variant-2 Circulating in the Middle East. Front Vet Sci. 2019;6:341.
24- Terregino C, Toffan A, Beato MS, De Nardi R, Vascellari M, Meini A, et al. Pathogenicity of a QX strain of infectious bronchitis virus in specific pathogen free and commercial broiler chickens, and evaluation of protection induced by a vaccination programme based on the Ma5 and 4/91 serotypes. Avian pathology : journal of the WVPA. 2008;37(5):487–93.
علوم درمانگاهی دامپزشکی ایران
دوره 20، شماره 1 - شماره پیاپی 34
بهار و تابستان 1405
شهریور 1405
صفحه 21-33